ELISA實驗是免疫學(xué)研究中zui常用的實驗方法之一。很多人覺得ELISA很簡單，其實不然。上海勁馬帶您繞開ELISA實驗中出現(xiàn)的各種問題，輕松搞定ELISA實驗~

常見問題分析：
1.標(biāo)曲不顯色或顯色很弱，樣本顯色：
  溶解標(biāo)準(zhǔn)品以及倍比稀釋時，未渦旋震蕩或不夠充分。
  標(biāo)準(zhǔn)品溶解、倍比稀釋時均需要渦旋震蕩以保證充分混勻。單純依靠移液器反復(fù)吹打，效率較低、效果也不一定。
2.標(biāo)曲和樣本均不顯色：
   在孵育階段靜置在桌面上，這樣非常不利于抗原抗體之間的充分接觸，導(dǎo)致顯色偏弱。
   推薦孵育階段，使用ELISA的微孔板振蕩器，調(diào)至合適的頻率，使抗原抗體充分接觸，保證結(jié)合效果。如果排除上述原因，有可能是漏加了某個組分，如檢測抗體、酶等。對于比較馬虎的新手，一定要做好標(biāo)記和記錄，或者使用添加染料的ELISA試劑盒。
3.標(biāo)曲顯色，樣本不顯色：
   當(dāng)樣本中目的蛋白濃度極低或者樣本中干擾因素較強，就無法檢測到。目前ELISA仍然是蛋白檢測靈敏度zui高的方法，與不同技術(shù)結(jié)合后，衍生出了多種類型的ELISA，提高了檢測靈敏度。
   對于目的蛋白濃度特別低的樣本，可以嘗試用高敏ELISA，但這也并不意味著一定能檢測到樣本濃度，只能說可以提高樣本的可測率，并使結(jié)果更加可靠。因為通常用普通ELISA檢測的樣本OD值都偏低，而高敏ELISA可提高樣本OD值，使之盡量位于標(biāo)曲范圍內(nèi)，得到的數(shù)值也更加可信。
4.標(biāo)曲和樣本都顯色，但復(fù)孔的CV大：
   這個問題就跟移液器和實驗者的操作有關(guān)了。移液器的使用維護不規(guī)范，就會造成移液的誤差較大；實驗者自身的操作習(xí)慣、加樣的一致性對復(fù)孔的CV也有很大影響。
   掌握移液器的正確使用和維護。關(guān)于個人的操作可練習(xí)移液動作、加快速度，確保移液的精密度。
5.本底偏高，樣本值測不到：
   標(biāo)曲的本底即Blank孔的OD值一般要求控制在0.1以下(對于高敏ELISA可以適當(dāng)放寬要求)。尤其是樣本值特別低的時候，本底過高會掩蓋目的信號，導(dǎo)致無法測到樣本值。
   在加入TMB顯色后，需實時觀察標(biāo)曲顯se情況。通常在S5孔有肉眼可見的微弱藍色，即可終止反應(yīng)。
6.樣本經(jīng)不同梯度稀釋，計算得到的樣本值差異較大：
   有時候我們不清楚樣本中目的蛋白的濃度如何，應(yīng)該如何稀釋，那么我們就會做下預(yù)實驗，確定稀釋倍數(shù)。然而有時候同一樣本做了幾個不同梯度稀釋后，計算得到的樣本值之間差異較大，應(yīng)該選擇哪一個稀釋倍數(shù)呢？
   這里涉及到了基質(zhì)效應(yīng)。通常血清樣本加樣量較高時，血清中的各種蛋白會抑制抗原抗體的接觸，基質(zhì)效應(yīng)較明顯。而經(jīng)過稀釋后，干擾因素也隨之稀釋，影響就會較小。當(dāng)某兩個梯度稀釋后，計算得到的樣本值接近時，我們就可以認為在該稀釋梯度時，樣本中的干擾因素影響較小，計算得到的值也是接近真實的。然而這樣的稀釋是針對目的蛋白濃度較高的樣本而言。對于濃度很低的樣本，經(jīng)過多倍稀釋后，就更加測不到了，此時可按照廠家說明書推薦的加樣方式操作。
7.不同試劑盒中的組分能否通用：
   除非是公用的試劑如洗液、檢測緩沖液，其它組分不建議用其它試劑盒的組分，甚至是同一指標(biāo)不同批次的試劑盒里的組分。這些組分(包括標(biāo)準(zhǔn)品、標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液、檢測抗體、酶等)都是經(jīng)過優(yōu)化的，如果貿(mào)然使用其它試劑盒的組分，有可能對結(jié)果產(chǎn)生影響。

關(guān)于酶聯(lián)免疫吸附（ELISA）實驗：
  1971年瑞典學(xué)者Engvail和Perlmann,荷蘭學(xué)者VanWeerman和Schuurs分別報道將免疫技術(shù)發(fā)展為檢測體液中微量物質(zhì)的固相免疫測定方法，即酶聯(lián)免疫吸附測定法(Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay, ELISA)。

                         
酶聯(lián)免疫吸附（ELISA）用于：
（1）免疫酶染色各種細胞內(nèi)成份的定位；
（2）研究抗酶抗體的合成；
（3）顯現(xiàn)微量的免疫沉淀反應(yīng)；
（4）定量檢測體液中抗原或抗體成份。